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爱德士缅因生物制品贸易(上海)有限公司
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选择3个适宜的连续稀释度的样品匀液(液体样品可以选择原液)
选择3个适宜的连续稀释度的样品匀液(液体样品可以选择原液),每个稀释度接种3管mugal肉汤管,每管接种1ml(如接种量超过1ml,则用双料mugal肉汤管),同时另取2支mugal肉汤管(或双料mugal肉汤管)加入与样品稀释液等量的上述无菌磷酸盐缓冲液(或生理盐水)作空白对照。将接种后的培养管置干37+1℃培养箱培养18h-24h。将培养管置干暗处,用波长366nm的紫外光灯照射,如显蓝色荧光,为大肠菌群阳性管;如未显蓝色荧光,则为大肠菌群阴性管。培养基检验原理:胰蛋白胨提供碳源和氮源满足-生长的需求;-可维持均衡的渗透压;磷酸-钾和磷酸-二钾是培养基ph缓冲剂:月桂基-钠可以抑制革兰氏阳性菌的生长;大肠菌群可产生一半乳糖苷酶,分解液体培养基中的酶底物4-伞形酮-b-d-半乳糖苷mugal,使4-伞形酮游离,在波长366nm紫外灯照射下呈现蓝色荧光。
三中检测大肠群的方法有哪些?
随着近年来食品安全问题的-,作为食品检测的重要检测对象,食品中大肠群检测也变得越来越重要。目前检测大肠群的方法随着技术进步也越来越多。本文比较了三中检测大肠群的方法,即发酵法、平板计数法、测试片法三种大肠群的检测方法,分析其优缺点,以便对大肠群的不同检测方法形成比较系统的认识,对以后的食品检测中检测大肠群有所帮助。
食品安全与人们的健康紧密相关,食品检测已经成为反映食品加工、运输、贮存等各个环节卫生和-状况的重要手段。大肠群作为食品、饮用水以及其他公共卫生的重点检验对象,其检测方法的有效性将大大提高食品检测的效率。随着近年来科学技术的进步,大肠群的检测方法也不断发展,各国建立了大肠群的标准检测方法和快速检测方法。
大肠平板计数法检测分为两个阶段
大肠平板计数法检测分为两个阶段。在初培养中,选取2~3 个适宜的连续稀释度, 每个稀释度接种2个无菌平皿,每皿接种1ml。同时取1ml生理盐水加入另外的无菌平皿作阴性对照。迅速将 15ml~20ml冷却至 46℃的结晶紫中性红胆盐琼脂vrba加入每个平皿中。小心地旋转平皿,使培养基与样液充分混匀,等到琼脂凝固以后,再加入3ml~4mlvrba 覆盖平板表层。翻转平板铺匀后,放在 36℃±1℃培养18~24h。平板菌落数按照以下方法选择:选取菌落数在 15cfu~150cfu之间的平板,分别计数平板上出现的典型和的大肠菌群菌落。
量取适量混匀后的水样于微波消解罐中
量取适量混匀后的水样于微波消解罐中取样量+消解溶剂用量应不大于消解罐规定的体积,如果样品中有机质含量低,加入5ml;如果样品中有机质含量高,加入4ml、1ml-和1ml溶液,放置,待反应平稳后加盖密闭,放入微波消解仪中,按照选定的升温程序升温程序见表进行消解。消解完毕,待罐内温度与室温平衡后,将消解罐取出,置于电热扳上加热蒸发至近干,冷却。加入适量溶液终浓度为0.5%(v/v)加热溶解残渣。
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