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典型菌落呈现紫红色,并且菌落周围有红色的胆盐沉淀环,菌落直径为 不小于0.5mm。证实试验为:从vrba平板上挑取10 个不同类型的典型和菌落,分别移种到bglb肉汤管内,36℃±1℃培养24~48h,观察产气情况。凡是bglb肉汤管产气,就可以报告是大肠菌群阳性。证实是大肠菌群阳性的试管比例乘以以上步骤中计数的平板菌落数总数,再乘以稀释倍数,就是每gml样品中大肠菌群数。
大肠菌群平板计数法操作起来比较简便,带有菌落的平板可以直接计数,还可以观察菌落特征,可见的菌落与大肠菌群量可以直接对应,便于得出定量结果,这种方法的缺点是因为大肠菌群在平板上很小,所以肉眼有时难以观察,需要用放大镜仔细辨认。验证实验需要挑选菌落,水中隐孢子虫和贾第鞭毛虫检测,因此受人主观的影响很大,如果没有挑对或挑取的数量不够多都可能导致假阴性结果[3]。
大肠菌群快速检验纸片法简称测试片法1994年被正式列入食饮具消毒效果监测的后,该方法被各级卫生---部门广泛使用,测试片法所用的材料简单,操作方便更快捷,检测所需时间仅为16~18h[4]。
目前大部分测试片法主要是应用国外的纸片进行验证试验。姚景慧等人[5]比较了纸片法和法gb法,对138份食品的菌落计数进行对比试验,结果呈现---的相关性p<0.05;suhren[6]比较了纸片法和标准平板计数法对牛奶进行的检测,结果也表明两者具有---的相关系数r=0.97—0.99;唐漪炎---[7],采用美国3m公司pertifilmpf法菌落总数测定纸片petri film aerobic plates,对十余种奶制品进行了检测,pf法检出率较gb法效率要高,但两法无---差别p>0.05。
对于预包装食品
应采集相同批次、独立包装、适量件数的食品样品,每件样品的采样量应满足微生物项目检验的要求。
独立包装小于、等于1000g的固态食品或小于、等于1000ml的液态食品,取相同批次的包装。
独立包装大于1000ml的液态食品,应在采样前摇动或用无菌棒搅拌液体,使其达到均质后采集适量样品,放入同一个无菌采样容器内作为一件食品样品;大于1000g的固态食品,应用无菌采样器从同一包装的不同部位分别采取适量样品,放入同一个无菌采样容器内作为一件食品样品。
对于散装食品或现场制作食品
用无菌采样工具从n个不同部位现场采集样品,放入n个无菌采样容器内作为n件食品样品。每件样品的采样量应满足微生物项目检验单位的要求。
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